Evaluación de la diversidad genética de Lepidochelys olivacea en la colonia de anidación Ixtapilla, Michoacán
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FIGURA 1

Palabras clave

Conservación
Diversidad genética
Lepidochelys olivacea
Región control

Resumen

Ixtapilla es un zona de anidación relativamente reciente para la tortuga golfina, en los últimos años ha presentado incrementos poblacionales, sin embargo, no cuenta con información sobre la diversidad genética, la cual es el componente básico de la biodiversidad, dado que juega un papel fundamental tanto a corto como a largo plazo en la dinámica de las poblaciones, además su conocimiento ayuda a planear estrategias de conservación, a entender la forma, la velocidad y las causas de su perdida. Por ello en este trabajo se evaluó la diversidad genética de Lepidochelys olivacea en la zona de anidación Ixtapilla, mediante el uso de la región control del mtADN de 27 tortugas. En esta zona de anidación se encontraron ocho haplotipos, dos de ellos privados para Ixtapilla. Se registró una diversidad haplotídica de 0.68 y diversidad nucleotídica de 0.0029, valores comparables con otras zonas de anidación del Pacifico oriental. Dados los valores de diversidad y la presencia de dos haplotipos privados para Ixtapilla, es de crucial importancia que se incrementen los esfuerzos de conservación para salvaguardar estos haplotipos, ya que de no aplicar las medidas de protección adecuadas, podría reducirse la población, llevando a la perdida de variabilidad genética en esta localidad.

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Citas

Abreu-Grobois A, Horrocks J, Formia A., Leroux R, Vélez-Zuazo X, Dutton PH, Soares L, Meylan A, Browne D. 2006. New mtDNA dloop primer which work for a variety of marine turtle species may increase the resolution capacity of mixed stock analysis. En: 26th Annual Symposium on Sea Turtle Biology and Conservation, Crete, Greece. Ed MG Frick, A Panagopoulou, Rees A, KL Williams. P 179.

Abreu-Grobois A, Plotkin P. (IUCN SSC Marine Turtle Special Group). 2008. Lepidochelys olivacea. The IUCN Red List of Threatened Species. Versión 2014.2. .

Avise, J.C. 2000. Phylogeography: The History and Formation of Species. Harvard University Press, Cambridge. Pp 59-60.

Bowen BW, Clark AM, Abreu-Grobois FA, Chaves A, Reichart HA, Ferl RJ. 1998. Global phylogeography of the ridley sea turtles (Lepidochelys spp.) as inferred from mitochondrial DNA sequences. Genetica 101: 179-189.

Briseño-Dueñas R. 1998. Variación genética en la región control del ADN mitocondrial de poblaciones de la tortuga golfina Lepidochelys olivacea en el Pacifico oriental y las implicaciones para su conservación. Tesis de maestría. Universidad autónoma de Sinaloa. 70 Pp.

Chassin-Noria O, Abreu-Grobois A, Dutton PH, Oyama K. 2004. Conservation genetics of the east Pacific Green turtle (Chelonia mydas) in Michoacan, Mexico. Genetica 121: 195-206.

Delgado TC, Alvarado DJ. 1997. Las tortugas marinas de la costa de Michoacán, México. Técnicas de conservación y manejo. ECOTONIA, AC., UMSNH 48 Pp.

Dutton PH. 1996. Methods for collection and preservation of samples for sea turtle genetic studies, pp. 17–24. En Proceedings of the International Symposium on Sea Turtle Conservation Genetics, Ed BW Bowen, WN Witzel. NOOA Technical Memorandum NMFS-SEFSC-396.

Eguiarte LE, Souza V, Aguirre X. 2007. Ecología Molecular. Secretaria de Medio ambiente y Recursos naturales, Instituto nacional de Ecología, Universidad Nacional Autónoma de México, Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad D.F., México. 592 Pp.

Encalada SE, Lahanas PN, Bjorndal KA, Bolten AB, Miyamoto MM, Bowen BW. 1996. Phylogeography and population structure of Atlantic and Mediterranean green turtle (Chelonia mydas): a mitocondrial DNA control región sequence assessment. Molecular Ecology 5: 473-483.

Excoffier L, Lischer HEL. 2010. Arlequin suite v. 3.5: A new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows. Molecular Ecology Resources 10: 564-567.

FitzSimmons N. 1997. Male marine turtles: gene flow, philopatry and mating systems of Green turtle Chelonia mydas. Tesis doctoral. Universidad de Queensland, Australia. 241 Pp.

Grant WS, Bowen BW. 1998. Shallow population histories in deep evolutionary lineages of marine fishes: Insights from sardines and anchovies and lessons for conservation. The Journal of Heredity 89: 415-426.

Lahanas PN, Miyamoto MM, Bjorndal KA, Bolten AB. 1994. Molecular evolution and population genetics of Greater Caribbean green turtles (Chelonia mydas) as inferred from mitocondrial DNA control región sequences. Genetica 94: 57-67.

Librado P, Rozas J. 2009. DnaSP v. 5: a software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics 25: 1451-1452.

López-Castro MC. 2004. Caracterización genética de la colonia anidante de Tortuga golfina Lepidochelys olivacea, en Baja California Sur, México. Tesis de maestría Centro de investigación científica y de educación superior de Ensenada. 74 pp.

López-Castro MC, Rocha-Olivares A. 2005. The panmixia paradigm of Eastern Pacific olive ridley turtle revised: consequences for their conservation and evolutionary biology. Molecular Ecology 14: 3325-3334.

Márquez R. 1990. FAO Species Catalogue: Sea turtles of the world. An annotated and illustrated catalogue of sea turtle species known to date. FAO Fisheries Synopsis Vol. 11 No. 25, Rome. Pp 43-48.

Mills LS. 2007. Conservation of wildlife populations: demography, genetics, and management. Blackwell, Malden, MA.

National Marine Fisheries Service and U.S. Fish and Wildlife Service. 2014. Olive ridley sea turtle (Lepidochelys olivacea). 5-year review: Summary and evaluation. NMFS Silver Spring, MD.

Owens DW, Ruíz GW. 1980. New methods of obtaining blood and cerebrospinal fluid from marine turtles. Herpetologica 36: 17-20.

Peñaflores SC, Natarén E. 1988. Resultados de acciones proteccionistas para las tortugas marinas en el estado de Oaxaca. Los recursos pesqueros del país. Instituto nacional de pesca. Secretaria de pesca. México. Pp 339-350.

Pérez RN. 2003. Caracterización fisicoquímica del sustrato incubatorio de los nidos de tortuga golfina (Lepidochelys olivacea) en la playa de Ixtapilla, Michoacán. Tesis de Licenciatura. Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo.

Piñero D, Caballero-Mellado J, Cabrera-Toledo D, et al., 2008. La diversidad genética como instrumento para la conservación y el aprovechamiento de la biodiversidad: estudios en especies mexicanas. Pp 437-494. En: Capital Natural de México, Vol. 1: Conocimiento actual de la Biodiversidad. Comp. J Sarukhán, J Soberón, G Halffter, J Llorente Bousquets. Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad, México.

Pope TR. 1996. Socioecology, population fragmentation, and patterns of genetic loss in endangered primates. Pp 119-159 En: Conservation genetics, case histories from nature Ed JC Avise, JL Hamrick. Chapman y Hall USA

Pritchard PCH. 1997. Evolution, phylogeny and current status. En: The Biology of Sea Turtles. Ed PL Lutz, JA Musick, CRC Press, Boca Raton, FL, USA. pp. 1–28.

Saccone C, Attimonelli M, Sbisá E. 1987. Structural elements highly preserved during the evolution of the D-loop containing region in vertebrate mitochondrial DNA. Journal of Molecular Evolution. 26: 205-211.

Shanker K, Ramadevi J, Choudhury BC, Singh L, Aggarwal RK. 2004. Phylogeography of olive ridley turtles (Lepidochelys olivacea) on the east coast of india: implications for conservation theory. Molecular Ecology 13: 1899-1909.

Tamura K, Peterson D, Peterson N, Stecher G, Nei M, Kumar S. 2011. Mega 5: Molecular Evolutionary Genetics Analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony Methods. Molecular Biology and Evolution 28: 2731-2739.

Thompson JD, Higgins DG, Gibson TJ. 1994. CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice. Nucleic Acids Research 22: 4673-4680.